（2）所得DNA应当完整，电泳检查时可给出精确性高、重复性好的迁移带型。 

（3）所得的DNA应有足够的量。例如，要研究多个遗传标记在某一植物居群中的分离情况，也许就要求从单株植物中提取的DNA可作100次分析；而在从大量植株中筛选一个单一遗传标记时，只需在一个eppendorf管中微量提取得到的DNA就绰绰有余了。 

如果是对植物进行大规模筛选，还应当满足下面这项要求：操作程序应当快速、简便、价格低廉，并尽可能避免使用有毒试剂。 

有关植物DNA提取步骤的原理，本节将从众多的DNA提取方法中，结合本实验室的体会，选择CTAB法作一简介。CTAB（cetyltriethy lammonium bromide）是一种去污剂，这种方法的原理是：一定浓度的CTAB与核酸结合并通过离心形成CTAB－核酸复合物沉淀，而多糖等留在上相中。要使CTAB－核酸复合物的分开则先溶于高盐溶液中，再用乙醇沉淀核酸，CTAB溶于乙醇中。所得核酸DNA大小为20～50kb。很少有RNA干扰，必要时也可用RNase去除残留RNA。无论是新鲜材料或经脱水处理的材料，本方法均适用。 

1.1 试验条件 

【药品试剂】 

抽提缓冲液（2×）： 

CTAB（W/V） 2% 

Tris-HCl（pH8.0） 100 mmol/L 

EDTA 20 mmol/L 

NaCl 1.4 mol/L 

巯基乙醇 2% 

10%CTAB溶液： 

NaCl 0.7 mol/L 

CTAB 10% 

沉淀缓冲液： 

CTAB 1% 

Tris-HCl（pH8.0） 50 mmol/L 

EDTA 10 mmol/L 

巯基乙醇 1% 

CsCl梯度溶液（每梯度）： 

CsCl 25 g 

TE缓冲液（pH8.0） 25 ml 

溴化乙锭（EB） 5 mg/ml 

TE缓冲液： 

Tris-HCl（pH8.0） 10 mmol/L 

EDTA 1 mmol/L

异丙醇溶液：向装有一定量异丙醇的瓶中加入TE缓冲液直至两相出现，然后边搅拌边加入固体CsCl，至下层TE相中出现白色沉淀，两相混匀待用

液氮

氯仿/异戊醇（24/1）

异丙醇

2%巯基乙醇